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线下分析工具
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时空生信分析线下解决方案是集图像QC和手动图像处理(ImageStudio)、空间转录组标准分析(SAW)、空间转录组可视化(StereoMap)于一体的全套方案。
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介绍图
分析工具
系统要求
主要功能
ImageStudio
64 bit Windows10
图像质控、图像拼接、组织分割、细胞分割
SAW
64 bit Centos/RedHat 78/64 bit Ubuntu 20.04
数据过滤、图像配准及表达矩阵获取等
StereoMap
64 bit Windows10
可视化展示及个性化调整
ImageStudio

ImageStudio

ImageStudio是时空组学线下图像处理软件,主要涉及图像质量评估和图像手动调整模块(图像拼接、组织分割和细胞分割)。图像质量评估主要从图像清晰度和图像track线两个评估指标对显微镜拍摄的图像进行评分,用于判断是否满足下游的数据分析。图像的手动调整模块,主要针对自动的拼接或者分割算法无法满足的场景,借助手动工具对图像进行处理。
ImageStudio
SAW

SAW

Stereo-seq分析流程软件包(Stereo-seq Analysis Workflow, SAW)整合了多个Stereo-seq空间组基因表达分析工具,这些工具可用于还原以及可视化测序数据在芯片上的空间表达信息。Stereo-seq原始测序数据经SAW分析后,得到可以用于下游分析的空间表达矩阵。
SAW
StereoMap

StereoMap

StereoMap是一个高清的可视化桌面端软件,用于查看Stereo-seq数据分析结果。本软件旨在通过可视化形式直观展现华大时空组学技术及产品,并可通过内部集成的多种工具对时空组学数据进行进一步探索挖掘。SAW流程中输出的GEF矩阵、RPI图像文件、IPR数据文件和聚类结果等均可在StereoMap中展示。
StereoMap
常见问答
Q 分析时如何选择合适的binsize? 展开 收起
A

可以按照不同组织类型的细胞大小等,根据下游分析效果多次调试bin20,50,100,200数值。其中bin20一般是动物细胞大小,bin50和100是常用于分析的binsize大小,bin200一般用于快速可视化效果展示。

Q ImageQC/ImageStudio、SAW、StereoMap的版本匹配关系? 展开 收起
A

imageQC

ImageQC描述

SAW

SAW描述



<= 1.0.8

文件格式:.json + .tar.gz

描述:ssDNA图像QC

<= 4.1.0

支持组织分割和ssDNA图像配准



>= 1.1.0

文件格式:.ipr + .tar.gz

描述:ssDNA图像QC

>= 5.1.3

支持ssDNA图像细胞分割;支持SE FASTQ数据分析



ImageStudio

ImageStudio描述

SAW

SAW描述

StereoMap

StereoMap描述

1.0

文件格式:.ipr + .tar.gz

描述:ssDNA图像QC及手动处理

>= 5.5

支持ssDNA图像细胞分割;支持SE FASTQ数据分析;

1.0

支持空间表达热图展示;基因分布megre展示;ssDNA图展示及手动配准;

2.0

文件格式:.ipr + .tar.gz

描述:ssDNADAPImIF图像QC及手动处理

>= 6.0

支持mIF配准;支持rRNA过滤

2.0

mIF图展示;mIFmerge展示;

2.1

文件格式:.ipr + .tar.gz

描述:ssDNADAPImIF图像QC及手动处理;及QC失败图像的全手动处理;

>= 6.1

 

支持ImageStudio全手动处理图像接入流程;

 

2.1

 

支持多gef一次性读入,通过切换标签展示


Q 细胞分割的效果会受到什么因素的影响比较大?如何获得最佳分割效果? 展开 收起
A

1. 细胞分割的效果受到显微镜拍照的情况和分割算法等多重因素的影响。拍照时如果存在组织过曝、模糊等因素,会影响算法识别细胞,导致无法分割。对于密集区域本身清晰度不够,并且可能存在细胞重叠的情况,那么也会导致算法难以识别。如果图像中组织不同区域局部亮度不均匀、或者存在实验导致的拖尾、背景存在杂质等情况,也会导致分割错误。(部分示例见下方)

2. 从算法本身来讲,因为分析流程的自动分割算法是基于人工标注的数据集,学习训练而来,所以一些非常少见的细胞形态未能涵盖进数据集中,也可能会导致算法无法准确识别出细胞。

3. 如果自动算法分割效果不佳,可以尝试使用ImageStudio桌面端图像处理软件进行手动调整,也可以尝试用使用Stereopy或其他算法重新分割。如果希望细胞分割出的细胞面积更大,可以尝试在分割之后使用Stereopy的细胞修正算法对细胞直径进行扩大,以覆盖更大的面积。

23


Q SAW中对测序数据做了哪些过滤? 展开 收起
A

• CID过滤:过滤CID无法比对上mask文件的reads;

• MID过滤:过滤MID序列中含有N碱基的reads,过滤MID为polyA的reads,过滤含有至少一个以上质量值低于10的碱基的reads;

• reads过滤:过滤含有接头和dnb序列的reads。


Q 基因表达可视化结果异常,没有组织轮廓怎么办? 展开 收起
A

• 第一步:检查HTML报告中Valid CID Reads的比例是否正常,不可低于10%,如低于10%请确认测序FASTQ文件和芯片SN对应;

• 第二步:如Valid CID Reads的比例较低,在10%~30%左右,可能存在两种可能性:

    ○ 参考基因组格式异常:Multi-Mapped Reads比例高, Uniquely Mapped Reads比例很低且几乎全部注释失败,需要检查注释使用的GTF/GFF文件是否符合格式要求,是否可以通过检测程序;

    ○ 存在混样的可能性:需要自行排查实验部分;


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